醋酸纖維素膜電泳裝置(全套配置: QC-A型醋酸纖維素膜電泳槽+DYY-6C型穩流穩流電泳儀或KYC-600C型雙穩定時電泳儀電源)主要用于分離和鑒定血清蛋白等生物材料，該產品已在生物化學實驗中普遍使用。

一 操作

1、 醋酸纖維薄膜的預處理

A 在膜片的無光澤面上用鉛筆輕輕地畫一條加樣線。加樣線可選在距膜片一端2CM處。

B 在一培養器內裝入電極緩沖液，將膜片小心地浮鋪在電極緩沖液面上，一般是將膜片的無光澤面朝下。膜片的底面吸收電極緩沖液后便逐漸下沉，直至電極緩沖液將膜片完全浸沒。

C 待膜片在電極緩沖液內浸透數分鐘后，用鈍頭鑷子取出，夾在兩層濾紙之間以吸去多余的電極緩沖液，但不可過干。

D 在膜片無光澤面的加樣線上進行加樣，通常作線形加樣，不作點狀加樣。用印模（長15mm，寬3mm的有機玻璃）蘸取血清蛋白樣品“印蓋”在加樣線上。印蓋時，注意印模兩端到膜片邊緣之間的距離基本相等。

E 樣品的加樣量或加樣體積隨樣品的濃度，染色和檢定方法等條件的不同而有較大的變化，通常每條加樣線上加0.5mg蛋白質樣品的量，如印蓋一次不足量，可在原位再印蓋一次。

F 用鈍頭鑷子將加過樣的膜片安放在電泳槽膜支架上，膜片兩端約10mm的部分與支架的頂面緊貼，醋酸纖維素膜依靠自身在電極緩沖液中的粘著力會緊繃在電泳槽兩端的膜支架上。在同一電泳槽內同時安放幾張膜片，相鄰膜片之間應相距3mm以上。

G 在電泳槽的兩個電極室內注入適量的電極緩沖液，用長40mm濾紙2~3層作搭橋，濾紙條一端與支架前沿對齊，另一端侵入電泳槽的緩沖液。待濾紙條濕潤后，去除氣泡，使濾紙緊貼于支架上。

H 用鈍頭鑷子將加過樣的膜片安放在電泳槽的支架上，加過樣的一端平貼在負極端支架，另一端平貼在正極端支架，呈繃狀態。

I 蓋上電泳槽蓋，讓膜片在電泳槽內水平靜置平衡10分鐘。然后將電泳槽的兩個電極與電泳儀直流電源的正負極分別相接。

J 通上電源讓電泳儀工作在穩壓狀態，電壓調至120~160V，相當于電場強度為15~20V/cm，也可讓電泳儀工作在穩流狀態，電流強度視膜片多少而定，一般每厘米膜寬電流強度控制在0.4~0.8mA。電泳時間50~70min。

K 醋酸纖維素膜電泳通常在室溫下進行。提高電場強度，可加快電泳速度。但在單位時間內膜上產生的熱量也越高，導致緩沖液的大量蒸發，所以需要有效地冷卻，避免膜片干燥。通常在冷卻槽里放置自來水，冷鹽水和冰塊不斷冷卻。

L 電泳完畢。

M 將膜片浸入為止。

N 注意事項

     膜片電泳前的預處理

       醋酸纖維素膜對水的親和力比紙小，電泳時要保證膜片上含有一定量的緩沖液，必須預先將膜片在緩沖液中浸透。浸膜的正確方法應該是將膜片小心地浮鋪在緩沖液的表面上，依靠膜片的底面逐漸吸收緩沖液然后下沉到緩沖液中。如果一開始就將膜片全部浸沒，膜片上會聚集許多小空氣泡從而形成許多不透明的斑點，這就需要很長時間才能將膜片浸透，不僅浪費時間而且影響以后的分離效果。此外，膜片浸透后用濾紙吸去多余的緩沖液時既不能吸得太干也不能過濕。太干，不利于電泳分離；太濕，會影響加樣，使樣品線條擴散變寬，電泳時各組分的起始點參差不齊，從而影響分離效果。

2 、電極緩沖液濃度的選擇

   常用的pH8.6巴比妥緩沖液，其濃度一般都是在0.05mol/L到0.09mol/L之間進行選擇的。選擇時，先初步定上某一濃度，例如電泳槽內兩極之間的膜條長度為8~10cm，每厘米膜長需要有電壓25V，電流強度要求每厘米膜寬為0.4~0.5mA。如果電泳時達不到或超過這個值，就應增加緩沖液濃度或進行稀釋。緩沖液濃度過低，所造成的影響是區帶移動速度過快、區帶寬度增大；緩沖液濃度過高，會使區帶移動速度過慢，從而導致某些分離區帶過于集中不易分辨。需要特別指出的是，在醋酸纖維素膜電泳中，由于電流的大部分是由樣品傳導的，因此會產生很多的熱。有時所選擇的緩沖液濃度認為是比較合適的，但是在環境溫度升高或使用較高的電壓的情況下，水份的熱蒸發作用加劇，也可造成緩沖液濃度過高，甚至使膜片干涸的后果。

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